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技術(shù)文章

百螢 Annexin V-mFluor Violet 510標(biāo)記實(shí)驗(yàn)方案

百螢Annexin V-mFluor Violet 510標(biāo)記探針是美國AAT Bioques研發(fā)的用于檢測(cè)細(xì)胞功能的探針,模聯(lián)蛋白是鈣依賴性磷脂結(jié)合蛋白家族。 下面一起來看看它的實(shí)驗(yàn)方案是怎樣的。

 

百螢 Annexin V-mFluor Violet 510標(biāo)記分析方案概述

用測(cè)試化合物(200μL/樣品)制備細(xì)胞

添加Annexin V結(jié)合物測(cè)定溶液

室溫孵育30-60分鐘

用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡分析

 

百螢 Annexin V-mFluor Violet 510標(biāo)記實(shí)驗(yàn)操作步驟

1.用膜聯(lián)蛋白V綴合物制備和孵育細(xì)胞:

1.1制備膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液:10mM HEPES,140mM NaCl和2.5mM CaCl2,pH 7.4。

1.2用測(cè)試化合物處理細(xì)胞一段所需的時(shí)間(用星形孢菌素處理的Jurkat細(xì)胞4-6小時(shí))以誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。

1.3離心細(xì)胞,得到1-5×105個(gè)細(xì)胞/管。

1.4將細(xì)胞重懸于200μL膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液中(來自步驟1.1)。

1.5在細(xì)胞中加入2μL膜聯(lián)蛋白V結(jié)合物。

可選:在細(xì)胞內(nèi)加入死細(xì)胞染色劑如碘化丙錠,用于壞死細(xì)胞。

1.6在室溫下孵育30至60分鐘,避光。

1.7在用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡分析細(xì)胞之前,加入300μL膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來自步驟1.1)以增加體積(參見下面的步驟1.8)。

1.8使用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡監(jiān)測(cè)熒光強(qiáng)度(參見下面的步驟2或3)。

 

2.使用流式細(xì)胞儀分析:

通過使用具有適當(dāng)過濾器的流式細(xì)胞儀來量化膜聯(lián)蛋白V綴合物。

注意:粘附細(xì)胞上的膜聯(lián)蛋白V結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)分析未經(jīng)常檢測(cè),因?yàn)樵诩?xì)胞分離或收獲期間可能發(fā)生特定的膜損傷。 然而,Casiola-Rosen等人先前報(bào)道了利用膜聯(lián)蛋白V對(duì)貼壁細(xì)胞類型進(jìn)行流式細(xì)胞術(shù)的方法。 和van Engelend等人(見參考文獻(xiàn)1和2)。

 

3.使用熒光顯微鏡分析:

3.1移取步驟1.6的細(xì)胞懸液,用膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來自步驟1.1)沖洗1-2次,然后用膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來自步驟1.1)重懸細(xì)胞。 將細(xì)胞添加到蓋有玻璃蓋玻片的載玻片上。

注意:對(duì)于粘附細(xì)胞,建議直接在蓋玻片上生長細(xì)胞。 與膜聯(lián)蛋白V綴合物孵育(步驟1.6)后,用膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來自步驟1.1)沖洗1-2次,并將膜聯(lián)蛋白V結(jié)合測(cè)定緩沖液(來自步驟1.1)加回到蓋玻片中。 在玻璃載玻片上翻轉(zhuǎn)蓋玻片并觀察細(xì)胞。 在與膜聯(lián)蛋白V綴合物孵育后,細(xì)胞也可以在2%甲醛中固定,并在顯微鏡下觀察。

3.2在熒光顯微鏡下用適當(dāng)?shù)臑V光片分析膜聯(lián)蛋白V綴合物的凋亡細(xì)胞

以上就是百螢 Annexin V-mFluor Violet 510標(biāo)記的實(shí)驗(yàn)方案,大家可以跟著操作起來啦。

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